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聚乙二醇(PEG)為常用的多聚物，可與疏水性蛋白和脂質分子結合共沉淀，早先應用于從血清等樣本中收集病毒，現在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。利用PEG沉淀外泌體存在不少問題：比如純度和回收率低，雜蛋白較多(假陽性)顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物，造血干細胞存儲機械力或者 Tween-20等化學添加物將會破壞外泌體等,影響實驗結果。
此處以某公司的產品為例，對其操作流程進行一個簡單介紹：
實驗前準備：由于FBS中含有豐富的外泌體，這將會給后續實驗帶來很大的污染，因此用48小時饑餓后的培養基上清，玻璃管,4℃，離心機,0.22um一次性濾器。
注意：饑餓細胞前要保證細胞狀態良好，細胞狀態直接關系到外泌體的產量。
1.收集4ml細胞培養上清。
2.3000×g,15分鐘4℃離心或者0.22μm濾器過濾。
3.配制反應混合液(A:0.25ml；B:0.25ml；C：lml)，造血干細胞存儲按照ABC的順序加，將混合物劇烈震蕩10秒后立即加入上一步準備的培養基上清中；注：使用玻璃管而不是塑料管。
4.劇烈震蕩30秒之后冰上靜置30分鐘。
5.分層后快速去除頂層和底層，將云霧狀層立刻轉移到1.5mlEP管中，離心5000×g3分鐘；其中頂層保留作為實驗對照。
6.再次分層后去除頂層和底層，將云霧狀層立刻轉移到05m的EP管中，離心5000×g3分鐘。
7.再次去除頂層和底層，開蓋揮發10分鐘；但不要讓沉淀完全干燥。
8.加入4倍沉淀體積的1×PBS，造血干細胞存儲用槍尖上下混勻40-60次后放在水平震蕩儀上高速震蕩10分鐘，間隔3分鐘上下吹吸40次（這一步非常關鍵，外泌體可能被包裹在沉淀中難以重懸，造成結果的產量低）。
9.5000×g,5分鐘離心，上清過柱，沉淀4℃保留。
10.1000×g,10分鐘，收集過柱后的液體即為產物。
